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解析蛋白質印跡實驗關鍵,TBST與PBST緩沖溶液的區別與使用指南

親愛的讀者們,今天我們聊一聊蛋白質印跡實驗中不可或缺的TBST和PBST緩沖溶液。它們雖然名字相似,但成分和用途卻有所不同。了解它們的特點和適用場景,對實驗成功至關重要。讓我們一起來探討,選擇最合適的緩沖液,助力實驗研究。

在蛋白質印跡實驗(Western Blot)中,TBST和PBST是兩種常用的緩沖溶液,但它們并非同一物質,下面,我們將深入探討兩者的區別和用途。

1、TBST的組成:TBST是TBS(Tris Buffered Saline)和Tween-20的縮寫,TBS是一種含有Tris-HCl、NaCl和Tween-20的緩沖溶液,常用于蛋白質印跡實驗中的洗滌步驟,TBS提供緩沖的pH值環境,而Tween-20則有助于蛋白質的洗脫。

2、PBST的組成:PBST是PBS(Phosphate Buffered Saline)和Tween-20的縮寫,PBS是一種含有NaCl、KCl、Na2HPO4和KH2PO4的緩沖溶液,其pH值通常為7.4,與細胞內的pH值相近,PBST在Western Blot實驗中也用于洗滌步驟,其作用與TBST相似。

3、兩者區別:雖然TBST和PBST都含有Tween-20,但它們的pH值和離子組成有所不同,在Western Blot實驗中,使用PBST時需注意,因為PBST中含有磷酸基團,可能會干擾磷酸化蛋白的檢測。

4、使用建議:在進行Western Blot實驗時,根據實驗需求選擇合適的緩沖溶液,檢測磷酸化蛋白時,建議使用TBST;而檢測非磷酸化蛋白時,可以使用PBST。

PBS緩沖液的配制是什么?

PBS緩沖液是生物學實驗室中常用的緩沖溶液之一,其配制方法如下:

1、原料:稱取磷酸二氫鉀(KH2PO4)、磷酸氫二鈉(Na2HPO4·12H2O)、氯化鈉(NaCl)、氯化鉀(KCl)和吐溫-20。

2、配制步驟

- 稱取KH2PO4 0.2g、Na2HPO4·12H2O 2.9g、NaCl 8.0g、KCl 0.2g和吐溫-20 1.0g。

- 將上述物質溶解于800mL蒸餾水中。

- 用HCl調節溶液至pH 7.4。

- 加蒸餾水定容至1L。

3、注意事項

- 配制PBS緩沖液時,需注意精確稱量和溶解。

- 配制后的PBS緩沖液需儲存于4℃冰箱中,避免反復凍融。

PBST該如何配制?

PBST是PBS和Tween-20的混合溶液,其配制方法如下:

1、原料:稱取PBS緩沖液和Tween-20。

2、配制步驟

- 將PBS緩沖液稀釋至所需濃度(1×PBS)。

- 稱取Tween-20,加入適量蒸餾水溶解。

- 將溶解后的Tween-20溶液加入PBS緩沖液中,混勻。

3、注意事項

- PBST的配制過程中,需注意Tween-20的加入量,過量可能會影響實驗結果。

- 配制后的PBST溶液需儲存于4℃冰箱中,避免反復凍融。

請問PBS緩沖液如何配?謝謝

PBS緩沖液的配制方法如下:

1、原料:稱取KH2PO4、Na2HPO4·12H2O、NaCl、KCl和吐溫-20。

2、配制步驟

- 稱取KH2PO4 0.2g、Na2HPO4·12H2O 2.9g、NaCl 8.0g、KCl 0.2g和吐溫-20 1.0g。

- 將上述物質溶解于800mL蒸餾水中。

- 用HCl調節溶液至pH 7.4。

- 加蒸餾水定容至1L。

3、注意事項

- 配制PBS緩沖液時,需注意精確稱量和溶解。

- 配制后的PBS緩沖液需儲存于4℃冰箱中,避免反復凍融。

PBST配置,調節pH值是在加Tween之前,還是之后呢?

在配制PBST緩沖液時,調節pH值通常是在加入Tween-20之前,以下是具體步驟:

1、稱取原料:稱取KH2PO4、Na2HPO4·12H2O、NaCl、KCl和吐溫-20。

2、溶解物質:將KH2PO4、Na2HPO4·12H2O、NaCl和KCl溶解于800mL蒸餾水中。

3、調節pH值:用HCl調節溶液至pH 7.4。

4、加入Tween-20:將吐溫-20加入溶液中,混勻。

5、定容:加蒸餾水定容至1L。

6、儲存:將配制好的PBST緩沖液儲存于4℃冰箱中,避免反復凍融。

Western Blot基本原理及步驟

Western Blot,即蛋白質印跡法,是一種常用的蛋白質分析技術,以下是Western Blot的基本原理及步驟:

1、基本原理:Western Blot通過將目標蛋白從復雜的混合物中分離并定量檢測,以確定蛋白質的存在與表達水平。

2、操作步驟

(1)蛋白質樣品獲得:根據實驗需求,獲取蛋白質樣品,細菌誘導表達后,可通過電泳上樣緩沖液直接裂解細胞;真核細胞加勻漿緩沖液,機械或超聲波室溫勻漿0.5-1min,4℃,13,000g離心15min,取上清液作為樣品。

(2)SDS-PAGE電泳:將蛋白質樣品進行SDS-PAGE電泳分離。

(3)轉膜:將分離后的蛋白質轉移到固相載體上,如PVDF膜或NC膜。

(4)封閉:將轉膜后的膜用封閉液(如5%脫脂奶粉)封閉,以防止非特異性結合。

(5)一抗孵育:將一抗(針對目標蛋白的抗體)加入封閉后的膜,進行孵育。

(6)洗滌:用TBST或PBST洗滌膜,去除未結合的一抗。

(7)二抗孵育:將二抗(針對一抗的抗體)加入洗滌后的膜,進行孵育。

(8)洗滌:用TBST或PBST洗滌膜,去除未結合的二抗。

(9)顯影:將膜與化學發光底物反應,觀察目標蛋白的表達水平。

3、注意事項

- Western Blot實驗中,選擇合適的抗體和封閉液至關重要。

- 實驗過程中,需嚴格控制溫度和時間,以確保實驗結果的準確性。

- Western Blot實驗結果需結合其他實驗方法進行綜合分析。